胖墩er猫
下面是我查到的一个方法:柠檬酸合成酶测定缓冲液配制:样品缓冲液PH 100tris/HCl 50 mM gKCl 100mM gEDTA 1mM g储存液1 10mlacetyle-COA mM mg储存液2 10mloxaloacetate(OAA)5 mM mg储存液3 10mlDTNB mM mg步骤:520ul样品缓冲液+20ulDTNB+20ul acetyle-COA+20ul待测酶液,25℃温浴5min。加入20ulOAA立刻放入25℃恒温的分光光度计,在波长412nm测定3min(每30秒记录一次光密度)光密度变化值。在25℃作双份测定,取其均值为测定值,酶活力单位用U/min/g表示,其计算:U/min/g=(Amin-A0)/min/mg(protein)。这个计算公式读得不太明白。该方法来自《缺氧及缺氧复合运动大鼠心肌_骨骼肌的适应性变化及机制》(博士论文,2005年,第三军医大学)
带嘴过日子
1、冰水浴研磨与液氮研磨的优缺点 (1)冰水浴研磨: 冰水浴研磨容易出现因温度控制不好而导致的酶失活的现象 冰水浴研磨因为研磨时间长,细胞破碎更加充分,因此研磨效率高 (2)液氮研磨: 当植物样本很难进行冰水浴研磨时可以采用这种方法 液氮研磨由于研磨时间短,因此容易出现细胞破碎不够充分的情况。(因此在进行研磨时可以在研磨成粉末时,再用研磨杵大范围研磨。在吸胀的胚变成接近白色粉末时为止) 在研磨之后注意与提取液混合时使用漩涡振荡器进行振荡。为了防止在振荡过程中温度升高导致酶的失活和蛋白质的分解,可以几组进行切换轮着进行漩涡振荡。(共振荡400s的效果就是可以的) 尽量用差值法记录最终称取的样本的重量 2、使用蛋白质计量酶活性的意义 由于每次研磨样品,无法保证蛋白质的提取效率相同。因此需要用蛋白质浓度计量酶活性 3、蛋白质和酶提取时间 在进行实验时,蛋白质要同时进行提取。(比如都是上午进行提取) 4、用文献数据初步核实测量时是否出现问题 用自己的数据与文献进行比较。在相同的情况下,自己的数据应当与文献的数据差异不大。(如文献数据是个位数的酶活力,如果自己出现小于0或者上千的酶活力,就需要进行复查是否在测量时出现了问题。) 5、酶活体系可能出现的问题以及可能原因 (1)差值过小 对照两组的酶含量都过低 反应体系不适合,无法进行充分反应 (2)差值过大 反应体系太小,即使是活力较低的组别,反应体系也无法承载(因此在进行实验之前,要确定反应体系能否承载自己的反应) 6、测量酶活时的实验步骤顺序 先测量样品的蛋白质浓度,若浓度相近时,才可以进行下一步实验。 在有些对实验更加严格的实验中,要首先确定蛋白质浓度,然后把蛋白质浓度统一后,才能再进行酶活力测量。 (?)稀释蛋白的浓度和稀释酶活的浓度应该是相同的(?) 7、测量时应注意的事项 在检测酶活时应尽量使用相同的体系。 在使用如96孔板进行测量时,应设置空白对照以及测量空白板的数据进行校正。 在使用比色皿用分光光度计进行测量时,注意空白对照组应与测量组使用相同的比色皿以减小误差。
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凡生活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的能力,而死的种胚细胞原生质膜丧失这种能力,于是染料便能进入死细胞而染色。 ——红墨水染色法凡有生命活